肾活检组织标本的制作
前 言 肾活检病理是诊断肾脏疾病的重要手段,许多疾病的命名主要源于肾活检组织学改变,如局灶节段性肾小球硬化和膜性肾病。肾活检病理诊断的正确性与肾组织标本制作质量关系密切,质量不过关(如切片不够薄,染色不清晰)将直接造成诊断错误,因此,应重视肾活检标本处理(取材、固定、包埋、切片到染色)的各个环节,以保证病理诊断的正确性。 肾脏病理包括尸检和活检标本,对于肾脏疾病而言,主要是活检标本,本章主要介绍肾活检标本的处理。
目前常规肾活检标本来源有两类:一类为切割式活检,一类为穿刺抽吸式活检,前者所取组织较多,但对肾脏损伤较大,不便在临床推广,临床常采用穿刺抽吸式活检。
一、肾组织取材 肾活检穿刺时病理技术员必须到场,以便对肾组织标本进行正确的处理,在技术员不能到场的情况下,必须按以下要求对标本处理者进行培训:①处理穿刺所获组织应轻柔,避免牵拉或用力钳夹组织;②分取组织时应在蜡板上进行,用锋利的刀片快速切割,避免用力挤压组织;③尽量用含固定液(光镜或电镜)和生理盐水的专用镊子把分割好的组织块移入固定瓶内;用镊子时避免钳夹组织过度而造成组织受挤压;④要求穿刺者尽量取两条组织。穿刺所获第一条含皮质组织送光镜检查,第二条组织在肉眼观察下进行分割,尽量切取皮质区1mm组织送电镜检查,余下组织
送免疫荧光检查。如果穿刺仅获一条组织,所取组织有三种情况(图3-10-1):整条均为皮质,皮髓组织和皮-髓-皮质组织,髓质区血供丰富,颜色略红,皮质区组织略白,分布的红色小点是肾小球,根据穿刺获取不同组织的情况,如图3-10-1所示进行分取。也有人建议纵切后,一半送光镜检查,一半分割后分送免疫荧光和电镜检查,但存在组织太细,不易观察的缺点,临床较少使用。⑤分送免疫荧光检查的组织用无菌的TRIS或PBS溶液浸湿的沙布轻轻包裹,置于培养皿中,避免直接置于冰块上,以免局部组织因冷冻收缩,造成结构破坏[1,2]。
图3-10-1 肾活检穿刺组织的分取
LM:光镜;IF:免疫荧光;EM:电镜
二、光镜标本的处理 (一)固定
光镜标本的固定液有多种。目前最常用的固定液为10%的中性福尔马林。中性福尔马林固定液的配方: 甲醛(40%) 100 ml、蒸馏水 900 ml、磷酸二氢钠4 g、磷酸氢二钠 6.5 g,固定时间至少6~12 h。
(二)前期处理
1. 脱水 脱水的目的是去除固定和水洗后组织中的水分,便于后续的透明和浸蜡,常用的脱水剂是乙醇或丙酮,后者脱水能力比乙醇强,但对组织收缩较大,致使组织变脆,多用于快速脱水。为了彻底脱水,一般常规采用不同浓度梯度的乙醇进行脱水:①70%乙醇 10~20 min, 2次;②80%乙醇 10~20 min, 2次;③90%乙醇 10~20 min, 2次;④95%乙醇 10~20 min, 2次;⑤无水乙醇 10~20 min, 2次。
2. 透明 透明的目的是便于石蜡包埋,因为组织脱水后,所用的脱水剂大多数不能和石蜡相混合,必须通过透明剂的作用才能浸蜡,所用的透明剂必须既能和脱水剂相混合,又能和石蜡相混合,起到桥梁作用,不但能提出脱水剂,又能代替脱水剂利于石蜡的浸入。当组织全部为透明剂占有时,光线可以透过,组织可呈现不同程度的透明状态,故称为透明。透明剂都是石蜡溶剂,绝大多数都不能与水混合,最常用的透明剂包括二甲苯、苯、甲苯、氯仿、香柏油、丁香油等。
(1)二甲苯:是应用最广的一种透明剂,价格便宜,沸点为144 C,折光率为1.497,易挥发,无色透明液体,易溶于乙醇又能溶解于石蜡,不能和水混合,
变硬变脆,所以组织不能停留过久。通常在组织进入二甲苯以前先经过1/2纯乙醇和1/2的二甲苯的混合液。
(2)甲苯:性质同二甲苯,沸点110.8 C,价格亦较便宜,透明较慢,但优点是组织在其内停留12~24 h也不变脆,故优于二甲苯。
(3)氯仿:组织在其中浸存较久时收缩不明显,也不变脆。因为它的易挥发性,渗入组织的氯仿,高温时比二甲苯易挥发,是其优点。缺点是渗透力稍弱,比二甲苯和甲苯慢,故透明时间较二甲苯时间延长2-3倍。
3. 浸透和包埋 组织经过脱水和透明后,要让石蜡等支持剂透入内部使组织变硬,并将组织包埋以利于切片,这个过程称为“浸透”和“包埋”。浸透的目的在于去除组织中的透明剂而代之以石蜡,使石蜡渗入组织内部后把软组织变为有硬度的蜡块,便于切片。石蜡是最常用的包埋剂。使用优质石蜡能保证切片厚度,无刀痕。根据石蜡熔点不同,石蜡分为软蜡和硬蜡,软蜡熔点低,硬蜡熔点高。一般在室温高时用熔点高的蜡,室温较低时用熔点低的蜡。
4. 切片 将蜡块修理成小梯形状,进行连续切片,常规切片厚度为2 m,有条件可进行1.5 m的连续切片。对于特殊染色,如刚果红则需厚度为5 m的切片[3~5]。
(三)染色
肾组织标本既要观察细胞结构,又要观察基底膜病变,许多肾脏疾病与免疫复合物相关,因此肾活检标本除常规苏木素-伊红(Hematoxyln-Eosin,HE)染色,需要多种特殊染色如PAS(periodic-acid schiff,PAS)、PASM(periodic acid-silver methenamine,PASM)和Masson三色染色等[6~8]。
1. 苏木素-伊红染色法 HE染色法即常规染色法,主要显示各种组织正常成分和病变的一般形态结构,进行全面观察。目前关于病理组织学的基本知识,绝大部分都是基于对HE染色切片的观察。在HE染色上基本可以观察到各种组织或细胞的一般形态、结构特点和病变的发生、发展及修复。
(1)苏木素染液配制方法:将苏木素溶于乙醇,
倾入明矾液中,混合后煮沸,加入氧化汞1 g,以玻棒搅匀,溶液呈深紫色,立即移入冷水中,使之冷却。静置过夜,过滤封闭保存,用前若加5%醋酸则染色较佳。
配方为:苏木素 0.9g、醋酸 12 ml、氧化汞 0.5~1.0 g、蒸馏水 200 ml、纯乙醇 10 ml、甘油 20 ml、钾明矾 20 g。
(2)伊红乙醇配制方法:将伊红乙醇溶解后,用滴管滴加醋酸使其呈糊状,加数毫升蒸馏水即可,过滤,将滤出的沉渣在烤箱中烤干,溶于95%乙醇200ml中即可。
配方为:伊红 1 g、蒸馏水 10 ml、醋酸数滴。
(3)染色过程:①切片常规脱蜡入水;②苏木素染色3~10 min;③自来水充分冲洗3~5 min;④0.5%~1%的盐酸乙醇分化数秒钟;⑤自来水冲洗1~5 min;⑥弱碱性水溶液返蓝;⑦自来水至蒸馏水冲洗5~10 min或更长;⑧0.5%~1%的伊红3 min;⑨乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封片。
(4)染色结果:细胞核被苏木素染成鲜明的蓝色,软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝色,黏液呈灰蓝色。细胞质被伊红染成深浅不同的粉红色至桃红色,胞质内嗜酸性细胞颗粒被染成反光强的鲜红色,胶原纤维呈淡粉红色,弹力纤维呈亮粉红色。高质量的HE染色细胞核与细胞质蓝红相映,且胞核鲜明,核膜、核仁及核染色质颗粒均清晰可见(图3-10-2)。
图3-10-2 HE染色:细胞质呈红色,细胞核呈蓝色( 400)
2. PAS染色法 PAS染色法属于特殊染色,不仅能显示糖原,而且还能显示
中性和某些酸性黏液性物质、软骨、脑垂体、霉菌、脂质、色素、淀粉样物质及基底膜。PAS的染色原理为:过碘酸是一种氧化剂,
它能氧化糖类及有关物质中的1, 2-乙二醇基,使之变为二醛;醛与Schiff氏试剂结合生成一 …… 此处隐藏:15707字,全部文档内容请下载后查看。喜欢就下载吧 ……
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