微生物实验方案
自来水中大肠菌群的检测
一、实验目的
(1)了解和学习大肠菌群的测定原理和测定意义。 (2)学习和掌握用稀释培养法测定水中细菌总数的方法。 (3)学习和掌握水中大肠菌群的检测方法。
二、实验原理
大肠菌群的定义是指一群好氧和兼性厌氧、革兰氏阴性、无芽孢的杆状细菌,并能在乳糖培养基中,经37℃24~48h培养能产酸产气。我国规定每升自来水中大肠菌群不得超过3个。检测大肠菌群的方法有稀释培养法和膜滤法两种,其中稀释培养法是标准分析法,为我国大多数卫生单位和水厂所使用。它包括初发酵试验、平板分离和复发酵试验三个部分。 二培养基的成分及制法: ①乳糖胆盐蛋白胨培养基:
蛋白胨20g,猪胆盐(或牛、羊胆盐)5g,乳糖10g,0.04%溴甲酚紫水溶液25mL,水1000mL,pH7.4。
制法:将蛋白胨、胆盐从乳糖溶于水中,校正pH,加入指示剂,分装,每瓶50mL或每管5mL,,并倒置放入一个杜氏小管,l15℃灭菌15min。
双倍或三倍乳糖胆盐蛋白胨培养基:除水以外,其余成分加倍或取三倍用量。 ②伊红美蓝琼脂培养基:
蛋白胨10g,乳糖10g, K2HP04 2g, 2%伊红水溶液20Ml,0.65%美蓝水溶液lOmL,琼脂17g,水1000mL,pH7.1。
制法:将蛋白胨、磷酸盐和琼脂溶于水中,校正pH后分装.121℃灭菌15min备用。临用时加入乳糖并熔化琼脂,冷至50-55℃,加入伊红和美蓝溶液,摇匀,倾注平板。 ③乳糖发酵管:
除不加胆盐外.其余同乳糖胆盐蛋白胨培养基。
器材:显微镜,酒精灯,无菌吸管(10m1、1m1),接种环,载玻片灭菌三角瓶,灭菌的具塞三角瓶,灭菌平皿,灭菌吸管,灭菌试管等
三.实验步骤 1.检样稀释:
以无菌操作将检样25ml(或25g)放于含有225ml灭菌生理盐水的灭菌塑料烧杯中,经充分振摇成1:10均匀稀释液。 用1ml灭菌吸管吸取1:10稀释液1ml,注入含有9ml灭菌生理盐水的 试管中,振摇成1:100稀释液。重复以上的操作,使成1:1000稀释液。 2.乳糖胆盐发酵试验
根据食品卫生标准要求或对检样污染情况的估计,选择二个稀释度,每一稀释度接种3管,接种量在1ml以上者,用双料乳糖胆盐发酵管。1ml及1ml以下者,用单料乳糖胆盐
发酵管。然后置于36±1 ℃培养箱内,培养24±2hr,如所有乳糖胆盐发酵管都不产气,则可报告为大肠菌群阴性;如有产气者,则可按以下程序进行。 3.分离培养
将产气的发酵管分别接种于伊红美兰琼脂平板上,置36±1℃温箱内,培养24hr后取出,观察菌落形态,并作革兰氏染色。
4.革兰氏染色的方法
A取载玻片用纱布擦干,载玻片的一面用marker笔画一个小圈(用来大致确定菌液滴的位置)。涂菌的部位在火焰上烤一下,除去油脂.B.涂片:液体培养基:左手持菌液试管,在酒精灯火焰附近5cm左右打开管盖;右手持接种环在火焰中烧灼灭菌,等冷却后从试管中沾取菌液一环,在洁净无脂的载玻片上涂直径2mm左右的涂膜,最后将接种环在火焰上
片上,使其薄而均匀。C晾干:让涂片在空气中自然干燥。D固定:让菌膜朝上,通过火焰2-3次固定(以不烫手为宜)。E染色:将固定过的涂片放报纸上,滴加草酸铵结晶紫液,染1min.F水洗:用水缓慢冲洗涂片上的染色液,用吸水纸吸干。简单染色结束可观察细胞形态.G媒染:滴加1滴碘液,染1min,水洗.H脱色:吸去残留水,连续滴加95%乙醇脱色20-30s至流出液无紫色,立即水洗。I复染:滴加蕃红复染3-5min,水洗。革兰氏染色结束。
5证实试验
在上述平板上,挑取可疑大肠菌群菌落1~2个进行革兰氏染色同时接种乳糖发酵管,置于36±1℃温箱内培养24±2hr,观察产气情况。乳糖发酵管产气,革兰氏染色为阴性的无芽孢杆菌,即可报告为大肠菌群阳性。(凡是在乳糖胆盐发酵管产酸、产气,在指示性培养基上能生长的,革兰氏染色为阴性的无芽孢杆菌,在复发酵管中产酸、产气的,即说明有大肠菌群的细菌存在—大肠菌群阳性;有一项不符的,即说明无大肠菌群的细菌存在—大肠菌群阴性。若伊红美兰琼脂培养皿上显示为深紫色,具有金属光泽的菌落;或者是紫黑色,不带或略带金属光泽的菌落;再或者是淡紫色,中心色较深的菌落。就说明大肠菌群为可以菌落了。)
6报告:根据证实为大肠菌群阳性的管数,查MPN检索表,报告每100ml(g)大肠菌群的最可能数。
图5-1 大肠菌群的检验程序
大肠菌群最可能数(MPN)检索表
1 1 1 1 1 1 1 1
2 2 2 2 3 3 3 3
0 1 2 3 0 1 2 3
110 150 200 240 160 200 240 290
3 3 3 3 3 3 3 3
2 2 2 2 3 3 3 3
0 1 2 3 0 1 2 3
930 1500 2100 2900 2400 4600 11000 >24000
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