观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变

观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变 本文关键词：胰岛，形态学，小鼠，代谢，老年

观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变 本文简介：摘要：目的：探讨妊娠期糖尿病（gestationaldiabetesmellitus,GDM）小鼠模型老年期糖代谢特点及孕期二甲双胍治疗对GDM小鼠胰岛素抵抗和胰岛功能的远期影响。方法：将小鼠随机分成对照组（n=6）、GDM组（n=6）、治疗组（n=6），采用高脂饮食诱导建立GDM动物模型，治疗组于

观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变 本文内容：

　　摘要：目的：探讨妊娠期糖尿病（gestational diabetes mellitus,GDM）小鼠模型老年期糖代谢特点及孕期二甲双胍治疗对GDM小鼠胰岛素抵抗和胰岛功能的远期影响。方法：将小鼠随机分成对照组（n=6）、GDM组（n=6）、治疗组（n=6），采用高脂饮食诱导建立GDM动物模型，治疗组于孕11.5~17.5 d给予二甲双胍治疗。分娩后均转维持饲料，并定期监测其体质量变化。并于分娩9个月后，应用口服葡萄糖耐量试验（oral glucose tolerance test,OGTT）及胰岛素耐量试验（insulin tolerance test,ITT）检测糖代谢。利用HE染色法观察胰岛的病理学改变。通过免疫组化染色法检测Ki67蛋白在胰腺组织中的表达。结果：分娩2个月后，与对照组相比，GDM及治疗组小鼠体质量增长明显（F=3.875,P=0.044）。与对照组相比，GDM组腹腔注射胰岛素后血糖下降缓慢（P=0.004）。GDM组胰岛萎缩，数目减少。Ki67在对照组胰岛中呈强阳性表达（P=0.032）。结论：GDM小鼠模型分娩后，葡萄糖的调节能力可以基本恢复正常，但是胰岛素抵抗持续存在。进入老年后，胰岛组织萎缩，功能逐渐减退，增殖能力降低。而孕期给予二甲双胍治疗可以增强其老年期的胰岛素敏感性，改善胰岛的病理学改变，但不能改变胰岛组织的增殖能力。

　　关键词：妊娠期糖尿病； 二甲双胍； 胰岛素抵抗；

　　妊娠期糖尿病（gestational diabetes mellitus,GDM）是指妊娠期首次发生或者发现的不同程度的糖代谢水平异常，是一种多基因遗传的代谢性疾病。近年来，GDM发病率不断升高，严重危害母婴健康，增加妊娠期高血压疾病、早产、巨大儿、新生儿呼吸窘迫综合征等疾病的发病率[1-3],同时还会对母亲及其子代产生远期危害。有研究发现，患有GDM的母亲，产后发生2型糖尿病[4]、心血管疾病[5]、代谢综合征[6]的风险也明显增加。因此，孕期控制血糖同时改善糖代谢是减少不良结局的关键。二甲双胍（metformin）是常用的口服降糖药物[7-8].但因其可通过胎盘屏障，故在GDM中应用的安全性一直存在争议。本研究旨在探讨GDM小鼠模型老年期糖代谢特点及孕期二甲双胍治疗对其胰岛素抵抗和胰岛功能的远期影响。

　　1 材料与方法

　　1.1 材料

　　实验动物：6~8周健康雌性C57小鼠40只，6~8周健康雄性C57小鼠20只，本研究符合作者所在单位实验动物伦理委员会所制定的伦理学标准。动物饲料：高脂饲料（Research Diets D12451），含45%脂肪，20%蛋白质，35%碳水化合物；低脂饲料（Research Diets AIN-93G），含15.8%脂肪，20.3%蛋白质，63.9%碳水化合物。主要试剂：二甲双胍及葡萄糖（美国Sigma公司），胰岛素注射液（江苏万邦），Ki67抗体（Proteintech）。主要仪器：血糖仪及试纸（美国强生）。

　　1.2 GDM动物模型的建立

　　健康成年的雌鼠随机分为2组，模型组（n=8）和正常组（n=8）。模型组高脂饲料喂养1周后与雄鼠按2﹕1比例合笼，次日清晨检查阴栓，若检测到阴栓则标记为妊娠0.5 d,整个孕期持续高脂饮食。正常组孕前1周及孕期给予低脂饲料，其余同模型组。于孕16.5 d行葡萄糖耐量试验，若模型组糖代谢明显异常，则造模成功。

　　1.3 实验分组

　　所有实验小鼠普通饮食适应性喂养2周，随机分为3组：对照组（n=6）、GDM组（n=6）、治疗组（n=6）。GDM及治疗组孕前1周及孕期给予高脂饮食喂养，对照组孕前1周及孕期给予低脂饮食喂养。于孕11.5~17.5 d,治疗组给予300 mg/（kg×d）二甲双胍溶液灌胃，GDM及对照组则给予相同剂量的PBS灌胃。2组孕鼠分娩后均给予普通维持饲料，喂养至12月龄。

　　1.4 检测指标

　　1.4.1 OGTT和ITT

　　检测小鼠12月龄时的口服葡萄糖耐量试验（oral glucose tolerance test,OGTT）水平。首先将小鼠禁食6 h,按禁食后的体质量，以2 g/kg的量经口腔灌注20%的葡萄糖溶液，由尾静脉采血，用血糖仪检测灌注前，灌注后30、60、90、120 min的血糖水平，绘制OGTT曲线并计算曲线下面积（AUC）。检测小鼠12月龄时的胰岛素耐量试验（insulin tolerance test,ITT）水平。首先将小鼠禁食6 h,按禁食后的体质量，以2.5 U/kg的量经腹腔注射0.25 U/mL的胰岛素溶液，由尾静脉采血，用血糖仪检测注射前、注射后15、30、60、120 min的血糖水平，绘制ITT曲线并计算AUC.

　　1.4.2 胰腺组织HE染色

　　所有12月龄的小鼠禁食6 h后，戊巴比妥钠溶液腹腔麻醉后，快速分离胰腺组织。4%多聚甲醛溶液固定，常规石蜡包埋切片，苏木精-伊红染色后于光镜下观察胰腺组织的形态学变化。

　　1.4.3 免疫组化法检测胰腺组织Ki67蛋白的表达

　　胰腺组织4%多聚甲醛溶液固定，常规石蜡包埋切片，免疫组化法检测Ki67的表达。脱蜡；微波修复法抗原修复，PBS冲洗，5 min?1次；3%过氧化氢溶液孵育10 min,PBS冲洗，3 min?3次；非免疫山羊血清室温封闭30 min;滴加一抗，4 ℃过夜，PBS冲洗，10 min?3次；滴加二抗，室温孵育1 h,PBS冲洗，10 min?3次；DAB显色；苏木精复染；脱水封片。显微镜下采集图片，利用Image-Pro Plus 6.0软件计算平均光密度。

　　1.5 统计学处理

　　采用SPSS 23.0软件进行统计学分析，结果以均数±标准差的形式表示。采用独立样本的t检验进行2组间比较；采用单因素方差分析进行多组比较，事后进行LSD检验分析2组间的差异；模型建立中的OGTT结果先进行重复测量方差分析，后应用独立样本t检验分析同一时间点2组间的血糖差异及曲线下面积差异；检验水准α=0.05. …… 此处隐藏：1146字，全部文档内容请下载后查看。喜欢就下载吧 ……